流式細胞實驗的對照應該如何設置？什么是同型對照？
答：①在應用流式技術檢測細胞表面抗原時，我們通常要設的一個對照就是同型對照。
同型對照：使用與熒光標記抗體相同來源、相同標記、相同劑量和亞型的免疫球蛋白，用于消除由于抗體非特異性結合到細胞表面而產(chǎn)生的背景染色。
②細胞因子的流式檢測時，由于細胞經(jīng)過了培養(yǎng)刺激活化的處理，為保證測得結果的準確性和客觀性，除了同型對照外，還需另設置未刺激對照和刺激對照。
未刺激對照：激活時由于BFA等的存在抑制了胞內蛋白的轉運，因此在激活過程中產(chǎn)生的抗原與細胞因子會滯留胞內，未刺激對照也應包含BFA等阻斷劑。
激活對照：激活對照使用細胞表面表達CD69來評價激活與否，如果未達到CD69期望的水平，則激活步驟出了問題，某一試劑可能失活，過期，制備不當或溶劑污染，需制備新鮮刺激劑重新實驗。

 

間接免疫熒光標記法如何設置同型對照？
答：同型對照的目的是消除由于抗體非特異性結合到細胞表面而產(chǎn)生的背景染色，而確保檢測結果的真實性。在采用間接免疫熒光標記法流式檢測時，所設的同型對照是與一抗相同劑量、相同亞型和相同生物素標記（或純化）免疫球蛋白，之后的熒光標記過程與實驗檢測組相同即可。BioLegend公司提供了各色標記和純化的同型對照免疫球蛋白。

 

為什么流式細胞術多色分析時要進行熒光補償調整？
答：在進行流式細胞術多色分析時,待測細胞通常攜帶兩種或兩種以上的熒光素,如異硫氰熒光素（FITC）、藻紅蛋白（PE）、別藻紅蛋白（PECY5）等。這些熒光素被激光激發(fā)后發(fā)出不同波長的熒光,理論上每一種熒光通過選擇恰當?shù)臑V光片可被相應的檢測器檢測到,而不受其他熒光的干擾。但目前這些熒光染料都具有寬發(fā)射譜性質,盡管它們的發(fā)射峰各不相同,但發(fā)射譜范圍有一定的重疊,也就是說,相鄰的檢測器會檢測到彼此的熒光信號,例如,FITC檢測器會檢測到少量的PE光譜,而PE檢測器會檢測到較多的FITC光譜。這樣就影響了檢測結果的準確性,因此,多色分析時必須進行光譜重疊的校正。

 

如何檢測胞內因子抗體的特異性？
答：可以應用過量的相應細胞因子先封閉該胞內因子的熒光標記抗體，或者先用不帶熒光標記的相應因子抗體先封閉細胞，進一步流式操作作對照；另外同型對照也可以判斷細胞的固定、破膜的效果以及非特異性背景的影響。

 

為什么用CD45αSSC設門法進行流式細胞術白血病表型分析？
答:免疫分型所用的樣本通常是骨髓,由于骨髓中各種大小和分化程度的細胞均有,只根據(jù)細胞大小和顆粒密度很難將不同組分的細胞區(qū)分開。而造血系統(tǒng)細胞的CD45表達的熒光強度（FI）與細胞分化程度有一定關系,即分化程度高的成熟白細胞其CD45的FI也高,分化程度低的細胞其FI也低,而紅系細胞的FIzui低。在成熟白細胞中,各類細胞其CD45的FI亦不相同,其中淋巴細胞和單核細胞的FI高于中性粒細胞。因此,根據(jù)各類細胞CD45的FI和顆粒密度不同,采用CD452SSC（側向角散射）設門法可以將原始細胞（低FI,低或高SSC）、淋巴細胞（高FI,低SSC）、單核細胞（高FI,中等SSC）、中性粒細胞（低FI,高SSC）、紅系細胞（zui低FI,低或高SSC）和細胞碎片（zui低FI,zui低SSC）清楚地區(qū)分開。